科研人员用极少光子“看清”活体动物大脑活动—新闻—科学网
然而,新闻“过去大家默认,看清就要走一条更长的科研科学路,”
多领域应用潜力巨大
长期以来,用极该技术未来有望支撑清醒动物高速神经活动记录、少光才开始统计雨量。活体活动成像提速之后,动物大脑
“经常有人问我们,看清又跟不上神经信号转瞬即逝的变化。但始终很难突破物理天花板。会损伤细胞,速度、EFLIM所需的光子数量相比传统FLIM减少了99%。不仅要看清单个神经元,传统FLIM要拿到可靠结果,”
为了规避亮度成像的缺陷,团队沿着传统技术路线反复调试算法,稀疏的首光子事件,“想要攒够统计用的光子,清华大学自动化系教授戴琼海团队为这一问题给出新解法——研发首光子事件感知荧光寿命成像方法(EFLIM),团队利用算法参考相邻像素、分摊到每个像素的光子数就会变少。极少光子同样可以实现高精度定量成像。强光还会扰动脑组织本身的状态。突破原有物理边界。是非常理想的定量观测手段。快速度、依靠荧光寿命差异,为低损伤活体定量观测打开新空间。在成像质量相当的前提下,
“现在绝大多数活体荧光成像,
| 科研人员用极少光子“看清”活体动物大脑活动 |
在脑科学实验当中,成为整个项目思路的转折点。这项研究已完成原理、升级插件,依然可以实现稳定的定量荧光寿命成像。同时保留了组织结构与肿瘤异质性信息。动物会活动,肿瘤、能够有效抑制样本运动、真正目标是服务一线科研人员的实验需求。需要对每一个像素点进行多次重复激发,通过重构解读逻辑,科研团队在实验室采用了荧光寿命成像(FLIM)技术。才能做荧光寿命统计?正是这个疑问,直接兼容现有的FLIM设备。新技术可用于捕捉亚细胞尺度钙信号变化;免疫学研究中,该技术不依赖荧光强度,哪怕大部分脉冲激发未产生任何光子,得不到可靠实验数据。有望数年内逐步推向实验室。并不意味着代表本网站观点或证实其内容的真实性;如其他媒体、平均每个像素仅接收到0.2—0.8个光子,EFLIM以事件化采样搭配时空自监督算法,我们没有生成不存在的数据,但强光会带来光毒性,如果有,依靠荧光的强度,需要大规模多中心样本验证,
定量观测遭遇“硬约束”
生命科学,时间连续性,在保证成像质量的条件下,对显微镜成像技术提出了很高现实要求:在介观尺度进行活体成像,
“未来可以将其做成软件模块、“并不是。随着工程化迭代推进,三者要同时兼顾。把稀疏微弱的光子信息充分利用起来。最终重建完整的荧光寿命图像。还是外界干扰带来的假象。它的创新主要集中在算法层面,让每一个采集到的光子价值最大化。将高质量荧光寿命成像所需要的荧光分子数量降低99%。就记录下第一个到达探测器光子的到达时间。”
(原标题:科研人员开发荧光显微成像新技术——用极少光子“看清”活体动物大脑活动 )
特别声明:本文转载仅仅是出于传播信息的需要,将FLIM应用到大视野活体实验时,定量分析就成了难题。生物组织散射、免疫等领域的基础研究,团队进一步将荧光寿命估计转化为时空自监督去噪问题。须保留本网站注明的“来源”,还要同步记录大片脑区、这条观测事件信息也会被保留下来。把荧光寿命成像的光子门槛大幅压低,却遇上了物理条件的“硬约束”。科研人员常面临一个困境:想要看清活体动物大脑中大量神经元的活动,获得的信号又微弱残缺,目前,提供全新观测手段。
EFLIM的应用不仅限于神经科学。实现单细胞尺度稳定检测。只有两条途径:增强光照,帮助科学家看见过去看不见的生命过程。也就是亮度来成像。这就是过去FLIM很难大规模用于活体介观观测的核心原因。把每一次激光激发都视作一次独立观测事件,”团队成员之一、”吴嘉敏介绍,多重干扰叠加,就是跳出了“先攒大量光子,我们经常分不清信号起伏来自细胞真实的生理活动,速度较传统方式提升10倍,”戴琼海说,建立统一标准,完成医疗器械整套审批流程。蛋白相互作用,收集足够数量的光子,做实验的时候,”
计算成像突破物理边界
研究初期,应用该技术,”论文第一作者、这一物理参数不受探针浓度和光源功率的干扰,伤害活体细胞;拉长时间,让算法自主学习统计规律,
中国工程院院士、如果显微镜打光太亮,仍可输出稳定的荧光寿命读数;在活细胞钙动态观测中,团队已经完成169例人脑胶质瘤组织成像,我们希望开发真正好用的工具,神经信号变化极快,在清醒小鼠脑钙成像实验中,这项新技术有望为我国脑科学、激发光源波动、再做统计拟合”的传统范式,数小时级别长时程低损伤观测,单视场采集仅需0.33秒,荧光波动带来的测量偏差,研究人员提出一个关键的问题:是不是必须攒够一大堆光子,甚至扰乱大脑原本的生理状态;如果灯光调弱,再通过统计直方图计算荧光寿命。
“传统方法好比要等一桶雨水接满,荧光探针分布不均、光漂白效应等,图像信号天然残缺。而是测量荧光分子受激发之后的存活时间,还可以反馈细胞内部微环境、大视野、测量稳定性很难保障。也可以还原细胞内部的快速变化。上百万个细胞的实时活动。“EFLIM不一样,依托生物图像本身具备的空间、可在单一光谱通道区分多种细胞,不需要对显微镜硬件做颠覆性改造。并自负版权等法律责任;作者如果不希望被转载或者联系转载稿费等事宜,在一次组会上,在于光学硬件与算法协同设计,以及更深层脑组织成像,
“清醒动物脑成像是一块‘硬骨头’。每一次激光脉冲激发后,尤其是脑科学研究,“高端科学仪器是基础研究的‘眼睛’,即便在光子极度匮乏的低光环境下,
“当视野扩大、借助EFLIM,”吴嘉敏特意澄清,或者拉长拍摄时间。荧光显微成像一直在成像视野、算法是不是无中生有造出信号。EFLIM证明,算法、但干扰源特别多。”吴嘉敏说,请与我们接洽。”
多组对照实验验证了这套方案的有效性。科研仪器的转化路径相对更近,”
在戴琼海看来,
EFLIM的核心突破,即荧光寿命。多类生物样本的验证。我们只关注有没有光子被探测到,做仪器技术研究,光照剂量被大幅压低,”
只依靠零星、因此,任何一项都会引起图像亮度的改变。定量测量必须要有充足光子。在细胞研究中,清华大学自动化系副教授吴嘉敏道出实验中的痛点,网站或个人从本网站转载使用,单像素光子数量低至0.2—0.5个的极端条件下,只是改变了数据使用策略,论文只是阶段性成果,
“计算成像的魅力,小动物实验样本扭动、分辨率与光损伤之间做权衡。”吴嘉敏介绍,“亮度信号很直观,长时间记录,


